词条 | 干细胞复苏技术 |
释义 | 简介在干细胞的实验操作中,冻存的干细胞要进行复苏,再培养传代,这一技术称为干细胞复苏。冷冻的干细胞活化原则为快速解冻,使之迅速通过细胞最易受损的-5~0℃,以避免冰晶重新结晶而对干细胞造成伤害导致干细胞的死亡。干细胞复苏时常用的保护剂有二甲亚砜(DMSO)和甘油,它们对细胞无毒性,分子量小,溶解度大,易穿透干细胞。干细胞活化后约需数日,或续代一至二代,其细胞生长和特性才会表现正常。干细胞成功复苏后对其活力的影响不大。 干细胞复苏的主要操作过程1. 从液氮罐中取出冻存管。(有时因冻存管未封严,浸入了液氮,取出后因冻存管内液氮迅速气化而发生爆炸,因此应带有防护眼睛和手套。) 2. 迅速放入盛有 36℃~37℃水的恒温水浴锅中,并不时摇动,尽快解冻。 3. 剪开纱布口袋,取出冻存管,用75%酒精擦拭消毒后,在超净台中打开冻存管,用吸管吸出干细胞悬液,装入离心管中,再补加10ml培养液,吹打使干细胞悬浮。 4. 低速离心(500~1000rpm)5~10min,弃去上清液后再重复2次用培养液漂洗、离心。 5. 加入培养液适当稀释后,再装入培养瓶中,置温箱培养,次日更换一次培养液后再继续培养。 在干细胞复苏操作中应注意问题1. 自液氮取出冻存管后,首先要检查盖子是否旋紧,由于热胀冷缩过程,此时盖子易松动。 2. 一管细胞一般可分装到1-2只培养瓶中,分装过多,干细胞浓度过低,不利于细胞的贴壁。 3. 加培养基的量和DMSO的浓度有关,如果加入培养基量过少,相对DMSO的浓度就会较大,从而影响干细胞生长,DMSO的浓度在小于0.5%-1%的时候对一般干细胞没有影响。所以若冻存液DMSO浓度为10%,需加10ml以上的培养基才恰好稀释至无害浓度。 干细胞复苏后存活率的计算取一滴冻存细胞悬液,台盼兰染色,活细胞不上色,死细胞染成兰色,计算细胞存活率: 存活率=(细胞总数-死细胞数)/细胞总数×100% |
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