| 词条 | 感受态细胞 |
| 释义 | § 概述 在自然条件下,很多质粒都可通过细菌接合作用转移到新的宿主内,但在人工构建的质粒载体中,一般缺乏此种转移所必需的mob基因,因此不能自行完成从一个细胞到另一个细胞的接合转移。如需将质粒载体转移进受体细菌，需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态以摄取外源DNA。 转化过程所用的受体细胞一般是限制修饰系统缺陷的变异株，即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变体(Rˉ,Mˉ),它可以容忍外源DNA分子进入体内并稳定地遗传给后代。受体细胞经过一些特殊方法(如电击法,CaCl2 ,RbCl(KCl)等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生了暂时性的改变,成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞(Competent cell)。[1] § 解释 理化方法诱导细胞，使其处于最适摄取和容纳外来DNA的生理状态，即指细菌细胞在一定的生长阶段，自身或通过人为处理而具有摄取外源DNA并使其基因型和表现型发生相应变化的能力。 一般来说,感受态细胞的最基本要求是： 1、没有质粒 2、容易被转进去（一般是G-细菌，细胞壁薄） 3、营养条件一般，非苛养菌 制备感受态细胞时,测OD600 在0.3--0.5之间，空白用无菌体的LB培养基。 感受态的感受效率最关键的是一个冷字，刚制备的感受态其感受效果最好，但是随着时间的延长感受效果会逐渐下降，所以要将制好的感受态细胞冻存于液氮中，或-70度冰箱保存，这样感受效果才不至下降过快。一般感受态制备好以后２４小时其转化效率最高，随后就逐渐下降。一般的宿主菌都不要传代太多，传多了就容易状态不好和污染杂菌。状态好的时候建议冻上一批，用EP管分装好，然后，每次就可以取冻存的菌种来扩增使用。 § CaCl2法处理感受态细胞 操作： 1.将快速生长的大肠杆菌置于经低温（0℃）预处理的低渗氯化钙溶液中，便会造成细胞膨胀，同时Ca2+会使细胞膜磷脂双分子层形成液晶结构，促使细胞外膜与内膜间隙中的部分核酸酶解离开来，离开所在区域，诱导细胞成为感受态细胞 细胞膜通透性发生变化，极易与外源DNA相粘附并在细胞表面形成抗脱氧核糖核酸酶的羟基－磷酸钙复合物。 2.此时，将该体系转移到42℃下做短暂的热刺激（90s），细胞膜的液晶结构会发生剧烈扰动，并随机出现许多间隙，外源DNA就可能被细胞吸收。进入细胞的外源DNA分子通过复制、表达，实现遗传信息的转移，使受体细胞出现新的遗传性状。 3.将转化后的细胞在选择性培养基上培养，筛选出带有外源DNA分子的阳性克隆。 意义： 将构建好的载体转入感受态细胞进行表达，不仅可以检验重组载体是否构建成功，最主要的是感受态细胞作为重组载体的宿主可以进行后续实验，如蛋白质表达纯化等工作。 |
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